Создание современного конкурентоспособного лекарственного препарата (ЛП) невозможно без глубокого понимания механизмов биофармацевтических процессов, происходящих при взаимодействии компонентов ЛП с биологическими объектами и биологическими поверхностями: белками и клетками крови, сосудами, слизистой, тканью кожи и т.д. Поэтому необходимо всестороннее исследование механизмов взаимодействия вспомогательных и лекарственных веществ (ЛВ) с белками и липидами мембран различных клеток, а также изучение фармакокинетики ЛП для оптимизации состава вспомогательных веществ и способа введения препарата.
Степень фармакологического действия препарата зависит, прежде всего, от количества ЛВ, всасывающегося в организм. В свою очередь на процесс всасывания влияет такой фармацевтический фактор, как лекарственная форма (ЛФ) и путь ее введения, правильный подбор которой создает необходимые условия для высвобождения и транспорта веществ с места введения в область фармакологического действия.
При высвобождении ЛВ из ЛФ немаловажную роль играют также его физико-химические свойства (например, степень дисперсности, растворимость, липофильность и т.д.), природа вспомогательных веществ и их количество, а также эндогенные факторы организма.
Биофармация – наука, изучающая зависимость терапевтического действия ЛП на организм от различных факторов (фармацевтических, биологических и т.д.). Это научная дисциплина фармации, занимающаяся исследованием влияния физических и физико-химических свойств действующих и вспомогательных веществ в ЛП, производимых в различных ЛФ, но в одинаковых дозах, на их терапевтический эффект.
Все фармацевтические факторы, которые оказывают влияние на биологическое действие ЛП, можно разделить на пять групп:
— физическое состояние ЛВ;
— простая химическая модификация ЛВ;
— вспомогательные вещества (их природа, физическое состояние и количество);
— ЛФ и пути ее введения в организм;
— технологический процесс.
Многочисленными исследованиями о влиянии ЛФ на терапевтическую эффективность ЛП установлено, что оптимальная активность ЛВ достигается только при его назначении в рациональной лекарственной форме. Кроме того, в этом случае можно избежать многих побочных эффектов ЛП на организм.
Важнейшей задачей при разработке и приготовлении ЛФ является обеспечение оптимальных условий для высвобождения и последующего всасывания субстанции. ЛФ признается соответствующей требованиям скорости высвобождения, если в течение установленного интервала времени из нее переходит в растворяющую жидкость оптимальное количество ЛВ. Следует отметить, что изучение кинетики высвобождения ЛВ in vitro в модельных условиях не может заменить исследования in vivo. Вызвано это различием в механизмах протекающих процессов. Так, при всасывании in vivo вслед за стадией растворения ЛВ следует стадия проникновения через стенки желудка и кишечника. В то же время в условиях in vitro моделируется лишь стадия растворения.
Биологическая доступность методами in vivo устанавливается на лабораторных животных (кроликах, собаках и т.д.). При этом либо определяют содержание ЛВ (метаболитов) в крови, либо устанавливают скорость их выведения с мочой через определенные промежутки времени.
Важнейший этап этих испытаний — количественный анализ. Он усложняется по сравнению с методами in vitro, поскольку приходится анализировать сложную смесь, включающую не только ЛВ или их метаболиты, но и различные соединения, входящие в состав биологических жидкостей. Для анализа фармакокинетических параметров наиболее проблематичным является определение концентрации препарата в месте нахождения в организме. Ошибка, возникающая на этом этапе, сводит на нет дальнейшие исследования.
Высокая точность фармакокинетических исследований достигается с помощью внедрения новых технологий подготовки образцов и экспериментального оборудования (современные хроматографические приборы и т.д.).
Установление биологической доступности методами in vitro основано на корреляционной зависимости между скоростью всасывания и скоростью растворения ЛВ. Поэтому для растворимых веществ метод определения скорости растворения служит основным методом определения эффективности высвобождения ЛВ из ЛФ.
Принцип действия созданных для этого многочисленных приборов заключается в механическом разрушении ЛФ и диффузии ЛВ в воду или другую растворяющую среду, имитирующую биологическую жидкость. По мере высвобождения или после полного высвобождения ЛВ растворяющую жидкость удаляют из прибора. Полученные пробы подвергают анализу, используя химические или физико-химические методы. Аналитический контроль — важнейший этап испытания.
В соответствии с рекомендациями ВОЗ ООН мерой биологической доступности является отношение (в процентах) количества всосавшегося ЛВ, назначенного в исследуемой ЛФ (А), к количеству всосавшегося того же ЛВ, назначенного в той же дозе, но в виде стандартной ЛФ (Б), т.е.:
БД = (А : Б) • 100.
Чаще всего биодоступность ЛП определяют путем сравнительного изучения изменений концентрации ЛВ в плазме крови при назначении исследуемой и стандартной ЛФ. Если в качестве стандартной ЛФ используется раствор для внутривенного введения (внутривенные инъекции, инфузии), который обеспечивает 100%-ную биодоступность, можно определить абсолютную биодоступность (АБД). Она определяется путем измерения площади под кривой изменения концентрации вещества в плазме или сыворотке крови во времени.
Важным показателем является также относительная биодоступность (ОБД), которая характеризует относительную степень всасывания ЛВ из испытуемого ЛП и препарата сравнения. ОБД определяется для различных серий ЛП при изменении технологии производства и для препаратов, произведенных различными фирмами. Обычно ОБД устанавливают для ЛП при одном и том же пути введения, но можно определять ОБД и при разных путях введения. Для определения ОБД используются данные об уровне содержания ЛВ в крови или его экскреции с мочой после одноразового или многократного введения. Достоверность полученных результатов значительно увеличивается при использовании перекрестного метода исследования, что позволяет устранить различия, связанные с влиянием физиологического и патологического состояния организма на биодоступность ЛВ. ОБД также определяется, чтобы сравнить биодоступность двух различных ЛФ для внесосудистого введения одного и того же лекарственного вещества.
Для препаратов, в значительной мере подвергающихся метаболизму в печени при пероральном приеме, используется понятие общая биодоступность. Это часть принятой внутрь дозы препарата, которая достигла системного кровотока в неизмененном виде и в виде метаболитов, образовавшихся в процессе всасывания в результате пресистемного метаболизма («эффекта первого прохождения»).
Техническое выполнение экспериментов in vitro может быть различно и определяется, главным образом, свойствами включенных препаратов. Резорбционные процессы вследствие индивидуальности каждого препарата и патологии больного различны, поэтому ЛС имеют и разную биодоступность.
Степень влияния ЛФ на процессы всасывания определяется способностью высвобождения активной субстанции из пероральной ЛФ и возможностью контакта со слизистыми желудка, кишечника и взаимодействия с их секретами. Существует два пути транспорта веществ через мембрану клетки: активный и пассивный. Пассивный транспорт подразделяется на движение ионов по градиенту концентрации и посредством облегченной диффузии, когда для транспортировки ионов используются специфические белки-переносчики клеточной мембраны. Высвободившееся лекарственное вещество достигает поверхности всасывания путем диффузии. Процесс всасывания осуществляется с помощью пассивной диффузии, активного транспорта вещества с белками организма или путем цитоза. Всасываемость лекарственных веществ зависит от структуры клеточной мембраны.
Различают четыре типа клеточных мембран.
- Имеющие поры – конвекция и диффузия молекул веществ происходит через заполненные водой поры,
- Имеющие поры и полупроницаемые слои – может осуществляться диффузия молекул неэлектролитов с относительно большой молекулярной массой,
- Не имеющие пор – могут диффундировать только жирорастворимые неионизированные молекулы,
- Без пор – активный транспорт может происходить с помощью молекул специфических веществ-переносчиков, образующих обратимую связь с веществом.
Транспорт крупных и трудно растворимых молекул осуществляется путем пиноцитоза с помощью движения мембраны и образования вокруг частиц ультрамикроскопических пузырьков-вакуолей.
ЛВ, поступающие в кровь любыми путями, разносятся по всему организму и равномерно распределяются во всем объеме крови до установления состояния подвижного равновесия в органах организма.
Для прогнозирования путей биохимического превращения лекарств необходимо учитывать, кроме липофильности, размера и поверхности соответствующей молекулы, также наличие групп, которые могут быть атакованы ферментами, и оптические свойства.
В настоящее время развивается новое направление фармакокинетики — стереофармакокинетика. При изучении биодоступности ЛП наиболее важными являются следующие параметры:
— максимум (пик) концентрации ЛВ в крови;
— время достижения максимальной концентрации;
— площадь под кривой изменения концентрации ЛВ в плазме или сыворотке крови во времени.
Na+-Li+-противотранспорт (Na+-Li+-ПТ) по Canessa M. является примером облегченной диффузии ионов. Na+-Li+-ПТ в мембране эритроцита (МЭ) может быть использован как in vitro модель для определения биодоступности различных ЛП. Na+-Li+-ПТ является лабораторным аналогом Na+-Na+-обмена и, хотя физиологическое и биофизическое значение Na+-Li+-ПТ остается неясным, тем не менее определение скорости Na+-Li+-ПТ является широко используемой методикой для оценки функционального состояния мембран клеток в целом.
Целью данного исследования явилось изучение нового подхода к исследованию биодоступности фармакологически активных веществ С10-С18 путем оценки их влияния на проницаемость по Na+ МЭ посредством определения скорости Na+-Li+-ПТ. Объектом исследования являлись фармакологически активные вещества С10, С12, С14, С16, С18, обладающие ранозаживляющим, антибактериальным и фунгицидным действиями.
Изучалось влияние различных концентраций этих веществ на скорость Na+-Li+-ПТ в МЭ in vitro. Определение скорости Na+-Li+-ПТ в МЭ (в микромолях лития на 1 литр клеток в час) проводилось по методу M. Canessa, при котором измеряется обмен внутриклеточного лития в загруженных этим ионом клетках на внеклеточный натрий из среды инкубации.
Концентрацию лития регистрировали методом атомной абсорбционной спектрофотометрии в эмиссионном режиме. Кровь в количестве 3 мл забирали из вены самотёком в пластиковые пробирки, смоченные гепарином (20 ЕД на 1 мл крови), содержимое перемешивали и пробирки помещали в контейнер с тающим льдом. Исследование состояло из следующих этапов:
1) отделение эритроцитов;
2) промывание эритроцитов;
3) прединкубация (3 часа);
4) промывания эритроцитов;
5) инкубация (1 час);
6) определение концентрации лития;
7) вычисление конечного результата.
Внесение исследуемых препаратов разных концентраций in vitro осуществлялось в среду В (среда с Na+ при 1 часовой инкубации).
Оценка влияния фармакологически активных веществ С10, С12, С14, С16, С18 на проницаемость клеточных мембран по Na+ проводилась путем подбора такой концентрации исследуемых веществ, которая не вызывала бы гемолиз эритроцитов. Подбор концентрации анализируемых веществ осуществлялся разведением исходного раствора. Отсутствие гемолиза определялось визуально. Дальнейшие исследования проводились с разными концентрациями изучаемых веществ: 0,001; 0,005; 0,01; 0,025 и 0,05 μМ. Результаты опытов приведены в таблице 1 и на рисунке 1.
Таблица
Влияние фармакологически активных веществ
С10, С12, С14, С16, С18 на скорость Na+—Li+-ПТ в МЭ (в исследованиях in vitro)
(скорость Na+-Li+-ПТ в мкМ Li/л кл/ч, М±m)
Вещес-тво | Исходное значение скорости Na+-Li+-ПТ | Концентрация веществ С10-С18 в µМ | ||||
0,001 | 0,005 | 0,010 | 0,025 | 0,05 | ||
С10 | 337±5 | 403±13* | 370±4* | 322±7 | 362±5 | 376±1 |
С12 | 337±5 | 398±15* | 350±24* | 303±12 | 322±15 | 323±15 |
С14 | 337±5 | 430±27* | 381±5* | 359±7 | 355±8 | 343±7 |
С16 | 337±5 | 443±39* | 441±42* | 369±20 | гемолиз | гемолиз |
С18 | 337±5 | 416±10* | 368±4* | 327±5 | 365±14 | 381±6 |
* достоверные различия с исходным значением скорости Na+-Li+-ПТ (р<0,05)
Из таблицы 1 видно, что фармакологически активные вещества С10, С12, С14, С16, С18 увеличили скорость Na+-Li+-ПТ в МЭ, но это увеличение происходило лишь под влиянием их минимальных концентраций, порядка 0,001-0,005 μМ. Под влиянием других концентраций: 0,01-0,025-0,05 μМ скорость Na+-Li+-ПТ изменялась незначительно (p>0,05).
Рис.1. Влияние концентрации фармакологически активных веществ
С10, С12, С14, С16, С18 на скорость Na+-Li+-противотранспорта в МЭ
Наибольшее влияние на проницаемость по Na+ оказала концентрация исследуемых веществ в 0,001 μМ, при этом вещество С10 увеличило скорость Na+-Li+-ПТ в МЭ с 337 до 403 мкМ Li+, т.е. в 1,2 раза (на 11,9%), вещество С12 – до 398, т.е. в 1,2 раза (на 11,8%), вещество С14 – до 430, т.е. в 1,27 раза (на 12,7%), вещество С16 – до 443, т.е. в 1,3 раза (на 13%), вещество С18 – до 416, т.е. в 1,2 раза (на 12,3%).
Бóльшие концентрации (0,01-0,05 μМ) не оказывают существенного влияния на проницаемость клеточной мембраны по Na+.
Таким образом, результаты настоящего исследования свидетельствуют о том, что фармакологически активные вещества С10, С12, С14, С16, С18, обладающие ранозаживляющим, антибактериальным и фунгицидным действием, влияют на скорость Na+-Li+-ПТ в МЭ. Малые концентрации этих веществ (0,001-0,005 μМ) увеличивают скорость Na+-Li+-ПТ в МЭ в 1,2-1,3 раза, т.е. увеличивают проницаемость клеточной мембраны по Na+.
О.В. Орлова, В.Н. Ослопов, С.А. Сидуллина
Казанский государственный медицинский университет, г. Казань
Литература:
1. Агафонов А.А. Программа M-IND-оценки системных параметров фармакокинетики модельно–независимым методом статистических моментов / А.А. Агафонов, В.К. Пиотровский / Химико-фармакологический журнал. – 1991. – № 10. – С. 16–19.
2. Березовская И.В. Актуальные проблемы безопасности воспроизведенных лекарственных препаратов / И.В. Березовская, В.М. Иванова / Клинические исследования лекарственных средств в России. – 2004. – № 3–4. – С. 16–23.
3. Бондарева И.Б. Рекомендации по проведению качественных клинических исследова–ний биоэквивалентности лекарственных препаратов / И.Б.Бондарева [и др.]. – М.: Медицина, 2001. – 128 с.
4. Егорова С.Н. Методы моделирования in vitro чрезкожного всасывания лекарственных средств из лекарственных форм местного действия / С.Н.Егорова // Казанский медицинский журнал, 2000. – Т. LXXXI. – № 2. – С. 146–147.
5. Орлова О.В. Исследование влияния диметилсульфоксида на проницаемость клеточных мембран / О.В. Орлова, С.Н. Егорова, В.Н. Ослопов // Казанский медицинский журнал, 2011. – Т. XCII. – № 6. – С. 901–904.